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T4 DNA LIGASE

 
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其它组分:

保存缓冲液组分:20 mM Tris-HCl (pH 7.5), 1 mM DTT, 50 mM KCl, 0.1 mM EDTA和50% (v/v)甘油。
10X T4 DNA Ligase 缓冲液(#B69):400 mM Tris-HCl, 100 mM MgCl2, 100 mM DTT, 5 mM ATP (pH 7.8, 25°C)。


描述:

  • 快速 – 室温下10分钟内完成粘末端的连接反应。
  • 该酶在Fermentas公司限制酶、PCR和RT缓冲液(添加ATP)中活性。
  • 配套提供聚乙二醇溶液以有效进行平末端连接。

 

  • 克隆酶切产生的DNA片段。
  • 克隆PCR产物。
  • 连接双链寡聚核苷酸街头或连接物。
  • 定点诱变。
  • 扩增片段长度多态性 (AFLP)。
  • 连接酶介导的 RNA 检测 (3)。
  • 双链DNA,RNA 或 DNA/RNA 复合体中缺口的修复。
  • 线性 DNA自身环化。

 

T4� DNA Ligase催化双链DNA或RNA中毗邻的5’ -磷酸基团和3’-羟基末端之间形成磷酸二酯键。酶还可以修复双链DNA、RNA或DNA/RNA复合体中的单链切口,连接DNA的粘性和平末端,但是该酶对单链核酸无酶活性 (1, 2)。T4 DNA Ligase需要辅因子ATP。
 
 
 
1 Weiss u/µl = 200 CEU*/µl
5 Weiss u/µl = 1000 CEU*/µl
30 Weiss u/µl = 6000 CEU*/µl
* 一个粘性末端连接单位的是指在16°C 、30分钟内50%连接HindIII酶切的lamda DNA产物所需要的酶的量。


 

 

1个活性单位是指在ATP-PPi交换反应中,37°C、20分钟内将1nmol [32PPi]转换为Norit可吸收形式所需的酶量(Weiss单位**(4)。酶活性分析混合物:66 mM Tris-HCl (pH 7.6), 6.6 mM MgCl2, 0.066 mM ATP, 10 mM DTT, 3.3�µM [32PPi].** 1个Weiss单位相当于约200个粘性末端连接单位。1个粘性末端连接单位:20� μl反应体系(50 mM Tris-HCl�(pH�7.5), 10 mM燤gCl2, 10 mM燚TT, 1 mM ATP, 25 µg/ml燘SA, 0.12 µM (300�µg/ml)的5’-DNA末 端)中,在16°C、30分钟内50%连接HindIII酶切的Lambda DNA产物所需要的酶量。
 
 
相关测试表明无内切和外切脱氧核糖核酸酶、核糖核酸酶、磷酸酶污染。 功能检测:粘性末端或平末端DNA的连接能力。
 

抑制剂:当反应体系中NaCl或KCl的浓度超过200� mM时,可强烈抑制T4 DNA Ligase活性。失活:65°C加热10分钟或者70°C加热5分钟。


 
 

 
 


 


 


注意事项:

  • 聚乙二醇(PEG) 极大地增加平末端连接效率 (5) 。反应体系中的PEG 4000的建议浓度为5% (w/v)。
  • T4 DNA Ligase与DNA结合会改变条带的琼脂糖凝胶电泳迁移率。为避免此现象,电泳前需处理样本或分子量标准。样本处理方法如下:样本或分子量标准与Fermentas公司6X DNA Loading Dye & SDS溶液(#R1151)混合;70°C加热5分钟或65°C加热10分钟后冰浴保存。
  • 转化时,连接产物的体积不能超过感受态细胞体积的10%。
  • 电转化之前,先用氯仿抽提方法除去连接混合物中的T4 DNA Ligase。然后经乙醇沉淀纯化抽提产物。


 


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